Identification of thermal protective effect of food proteins in relation to phycocyanin

Abstract

One of the promising sources for creating specialized foods is the biomass of Arthrospira platensis food microalgae. Biomass of A. platensis and its aqueous extracts are used as a source of bioactive compounds, primarily phycocyanins which are protein macromolecules that largely determine the antioxidant, immunomodulatory and anti-inflammatory properties of this cyanobacterium. The chromophore part of phycocyanin is photo- and thermolabile and can undergo restructuring, as a result of which phycocyanin loses its biological value. Various food proteins can be used to protect chromophoric compounds. In this work, two types of proteins (whey and egg proteins) were studied in the complex with phycocyanin.

The aim of the study was to identify the heat-protective effect of egg and milk proteins in relation to phycocyanin by using colorimetric method and differential scanning calorimetry.

Material and methods. Food sodium caseinate, whey protein concentrate, unfractionated edible egg white and phycocyanin concentrate were used as research objects. Combinations of phycocyanin with proteins were prepared by mixing equal volumes of 1% aqueous solutions, followed by thermostatting the mixtures at a temperature of (28±0.5) °C for 60 minutes in an incubator shaker at a stirring speed of 100 rpm. Studies of the thermodynamic characteristics of the samples separately and in combination with phycocyanin were carried out using differential scanning calorimetry by heating of the samples from 25 to 200 °C at a rate of 5 °C/min. The color change of phycocyanin solutions during storage for 20 min at a temperature of 50 °C was assessed by spectrocolorimetry.

Results. The most pronounced low-temperature endothermic effect (peak at 60 °C) was detected in the whey protein concentrate. The ovalbumin had a small thermal effect at 70 and 100 °C, while the sodium caseinate had a small thermal effect at 132 °C. The dry phycocyanin sample had two peaks at 80 and 121 °C and the onset of thermal degradation at 65 °C. The destruction temperature of the sodium caseinate solution was 100.8±1.3 °C, for the whey protein concentrate solution – 113.7±0.8 °C. The aqueous solution of phycocyanin had a thermal effect peak at 103.3±1.7 °C. Mixing phycocyanin with the studied edible proteins resulted in changes in the peak degradation temperatures. The most noticeable decrease was observed for ovalbumin in complex with phycocyanin (at 101.9±1.9 °C), indicating a decrease in the thermal stability of phycocyanin in the presence of this protein. The combination of phycocyanin with whey protein concentrate led to a significant increase in the destruction temperature (at 112.0±2.1 °C). In terms of color index, solutions of phycocyanin complexes with proteins differed significantly from an aqueous solution of phycocyanin. The samples had threshold values for color tolerance (ΔE) in the range of 2 units, that is they were visually distinguishable immediately after preparation. All samples tended to darken when heated to 50 °C.

Conclusion. Increasing the thermal stability of phycocyanin is possible when it is combined with whey protein concentrate. The observed effect significantly exceeds the effect of combining phycocyanin with sodium caseinate and egg protein. The change in color of solutions of the studied complexes when heated to 50 °C occurred to a lesser extent in the presence of whey protein concentrate, which may indicate greater preservation of the chromophoric groups of phycocyanin. The results obtained indicate the prospects of using whey protein concentrates for the development of new forms of functional food ingredients containing phycocyanin.

Keywords: phycocyanin; egg protein; sodium caseinate; whey proteins; differential scanning calorimetry; spectrocolorimetry

Funding. The research was supported by Russian Science Foundation (project N 22-16-00006) https://rscf.ru/project/22-16-00006/

Conflict of interest. Authors declare no conflict of interest.

Contribution. The concept and design of the study – Novokshanova A.L., Bilyalova A.S.; data collection – Biryulina N.A., Bilyalova A.S.; writing the text – Novokshanova A.L.; editing, approval of the final version of the article, responsibility for the integrity of all parts of the article – all authors.

Acknowledgments. The authors are sincerely grateful to Varuzhan A. Sargsyan, PhD in Biology, Senior Researcher at the Laboratory of Food Biotechnology and Specialized Products of the Federal Research Centre of Nutrition, Biotechnology and Food Safety for assistance in mastering the differential scanning calorimetry method and interpreting the results.

For citation: Bilyalova A.S., Biryulina N.A., Novokshanova A.L. Identification of thermal protective effect of food proteins in relation to phycocyanin. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2024; 93 (6): 84–90. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2024-93-6-84-90 (in Russian)

Борьба с глобальной пандемией COVID-19 выявила первостепенные задачи, необходимые для ограничения распространения возбудителя этой инфекции: вакцинация населения и формирование коллективного иммунитета популяции [1, 2]. Одним из факторов, лимитирующих эффективность вакцинации, является состояние иммунной системы человека. Поддержание гуморального и клеточного звеньев иммунной системы человека во многом зависит от оптимального рациона питания, отвечающего потребностям организма в макро- и микронутриентах, в минорных биологически активных веществах пищи. Иммуномодулирующие и противовоспалительные эффекты нутриентов в значительной степени обусловлены их антиоксидантным действием. К числу таких биологически активных соединений относится фикоцианин (PC), выделяемый из биомассы пищевой цианобактерии (сине-зеленой водоросли) Arthrospira platensis (A. platensis).

Фикобилины в составе A. platensis - это С-фикоцианин и аллофикоцианин, представляющие комплексы белков с пигментом - фикоцианобилином. Его небелковая часть - фикоцианобилин - представляет собой цепочку тетрапирролов, которые, в отличие от порфиринов гемоглобина и хлорофилла, не замкнуты в цикл и не имеют атомов металлов. Белковая часть фикоцианина состоит из 2 субъединиц α и β с гексамерной конформацией (αβ) 6 при pH 5,0-6,0 и тримерной конформацией (αβ) 3 при pH 7,0 [3, 4]. Известно также, что субъединицы могут образовывать димеры или более крупные, чем гексамеры, агрегаты. С белковой частью фикоцианобилин связан ковалентной тиоэфирной связью через НS-группы Cys84 α-цепи и через остатки Cys84 и Cys155 β-цепи. Следовательно, в одном комплексе фикоцианина может быть от 6 до 18 и больше хромофорных структур.

Фикоцианин представляет интерес не только как одобренный пищевой краситель, но и как биологически активный ингредиент для создания специализированных пищевых продуктов [5]. Однако из данных литературы известно, что хромофорная часть фикоцианина фото- и термолабильна и может подвергаться перестройке, в результате которой фикоцианин утрачивает биологическую ценность [6, 7].

Естественной защитой хромофорных соединений при создании специализированных пищевых продуктов и биологически активных добавок к пище могут служить различные пищевые белки. В своей работе мы остановили выбор на 3 видах белков: казеин, белок молочной сыворотки, нефракционированный белок яйца. Эти протеины содержат полный набор незаменимых аминокислот в количестве, достаточном для биосинтеза белка в организме человека.

Протективная способность белков яйца и молока связана с их гетерогенностью и свойствами, обусловленными природой. Например, в белках яйца идентифицировано несколько фракций: овальбумин, овомукоид, овомуцин, овокональбумин и овоглобулин. Овальбумин и овомуцин в растворимой форме устойчивы к воздействию тепла. Овомукоид способен ингибировать трипсин и химотрипсин, а также подавлять протеазное действие грибков или бактерий. Кроме того, белки яйца могут связывать углеводы и биогенные минеральные вещества. Подобные свойства присущи и белкам молока. Казеиновые фракции термоустойчивы при нейтральных значениях среды. Белки молочной сыворотки могут образовывать комплексы с такими низкомолекулярными соединениями, как витамины, а также с углеводами и минеральными веществами.

Именно способность пищевых белков связывать небелковые компоненты предопределяет исследования, направленные на создание комплексов белков и биологически активных соединений. В таких комплексах белки могут быть полезны для защиты и сохранности биологически активных соединений от разрушения при хранении, в технологическом процессе, а возможно, и при переваривании в желудочно-кишечном тракте.

Цель работы заключалась в выявлении термозащитного действия белков яйца и молока в отношении фикоцианина путем использования методов колориметрии и дифференциальной сканирующей калориметрии (ДСК).

Материал и методы

Объектами исследования были сухой пищевой казеинат натрия (CasNa) с массовой долей белка 85% (ООО "Тагрис", РФ) по ГОСТ 33920-2016; сухой концентрат сывороточных белков молока (WPC) с массовой долей белка 80% (WPС-80) в сухом веществе (ООО "Тагрис молоко", РФ); сухой пищевой яичный белок (OVA) 90% (Ovopol Ltd., Польша); сухой концентрат фикоцианинов с суммарным содержанием С-фикоцианина и аллофикоцианина 49,0%, полученный из биомассы A. platensis (НПО "Биосоляр МГУ", РФ), как описано ранее [8]. Водный раствор фикоцианина с массовой долей 1% готовили из сухого концентрата.

Методология исследований включала:

- исследование термодинамических характеристик пищевых ингредиентов по отдельности и в комбинации с фикоцианином методом ДСК;

- спектроколориметрическую оценку изменения цвета растворов фикоцианина в процессе хранения.

Комбинации фикоцианина с белками готовили, смешивая равные объемы 1% водных растворов, с последующим термостатированием смесей при температуре 28±0,5 °C в течение 60 мин в шейкере-инкубаторе при скорости перемешивания 100 об/мин.

Исследования термодинамических характеристик образцов проводили ДСК с помощью прибора DSC-3 (Mettler Toledo, Швейцария). Образцы взвешивали в алюминиевых тиглях объемом 40 мкл с точностью 0,1 мг и укупоривали. Масса навесок в зависимости от образца составляла 3,0-7,0 мг. Нагрев образцов проводили в диапазоне от 25 до 200 °С со скоростью 5 °C/мин.

Измерение цвета проводили при помощи спектрофотометра BS7016 (3NH, Китай). Образцы хранили в течение 20 мин при температуре 50 °С. Оценку цветового допуска проводили по формуле:

где L1* , 2 - показатель светлоты, а1* , 2 - цвет в диапазоне от зеленого к красному, b1* , 2 - цвет в диапазоне от синего к желтому сравниваемых образцов.

Испытания образцов проводили в 3 повторностях. Для статистической обработки результатов использовали пакет программ Microsoft Excel. Вычисляли среднее значение (М), стандартную ошибку среднего (m), данные представлены как M±m. Анализ полученных результатов методом главных компонент проводили с использованием пакета программ SensoMiner в среде R (версия 4.2.2).

Результаты и обсуждение

При проведении исследований были получены термограммы всех исследуемых образцов. На рис. 1 приведены кривые тепловых эффектов отдельных ингредиентов в диапазоне от 30 до 180 °C.

Тепловые эффекты, обнаруженные в данной области, характеризуют наличие лабильных структур в изучаемых образцах. Как видно на рис. 1, наиболее выраженный низкотемпературный эндотермический эффект (пик при 60 °C) характерен для образца концентрата сывороточных белков, что может соответствовать начальной температуре их денатурации [9]. Образец овальбумина имеет небольшой тепловой эффект при 70 и 100 °C, что характерно для пиков денатурации этого белка [10], а казеината натрия - при 132 °C аналогично результатам, представленным в [11]. Сухой образец фикоцианина в этой области имеет 2 пика при 80 и 121 °C и начало термической деструкции при 65 °C [12].

Наличие данных тепловых эффектов, на порядок меньших по сравнению с основными пиками, вероятно, объяснимо природой самих белков, являющихся гетерогенными объектами, которые имеют несколько фазовых переходов при нагревании. Кроме того, изучаемые образцы не были химически чистыми веществами, а представляли собой смесь различных соединений, которые также могут вносить свой вклад в формирование наблюдаемых эндотермических процессов.

Наиболее выраженными в изучаемом температурном диапазоне являются высокотемпературные пики, отражающие температуры денатурации и плавления изучаемых образцов (рис. 2).

Как видно из данных рис. 2, последовательность пиков в данной температурной области соответствует последовательности низкотемпературных пиков (WPC <OVA <PC <CasNa). Принимая во внимание существенно бо́льшие значения теплового потока в данном регионе (60 против 0,7 мВт) и, как следствие, бо́льшие соотношения сигнал-шум, оценку термической стабильности растворов фикоцианина в смеси с пищевыми белками проводили посредством анализа этого региона. Результаты измерения температур плавления растворов исследуемых образцов приведены в таблице.

Как видно из данных таблицы, температура деструкции изучаемых образцов варьирует в достаточно широком диапазоне.

Смешивание фикоцианина с исследуемыми белковыми препаратами приводило к существенному изменению температур пиков деструкции в сторону как повышения, так и понижения. Наиболее заметное снижение отмечено для овальбумина в комплексе с фикоцианином.

К значимому повышению температуры деструкции приводило сочетание фикоцианина с концентратом сывороточного белка, что согласуется с данными, полученными ранее [16]. Наблюдаемый эффект может быть связан с образованием комплекса фикоцианина с сывороточными белками, в котором последние оказывают защитное действие на термически лабильные компоненты смеси.

Учитывая результаты исследования методом ДСК, эксперимент по колориметрической оценке стабильности комплексов фикоцианина с различными белками проводили при 50 °C для исключения деградации белков при нагреве.

На рис. 3 показаны результаты сравнения окраски изучаемых образцов в цветовом пространстве CIELab по показателю допуска (ΔE), характеризующему отличия между цветом комплексов и образца фикоцианина. Интенсивность цветности всех образцов сравнивали со средним значением этого показателя для фикоцианина.

Как видно из представленных данных (см. рис. 3), растворы комплексов фикоцианина с белком существенно отличаются от контрольного образца (PC) по показателю цветности. В рамках шкалы использованного цветового пространства принято, что при ΔE<1 образцы не отличимы между собой, при 1 <ΔE <2 - различимы обученным экспертом, при 2 <ΔE <3,5 - различимы неподготовленными людьми [17]. Все исследуемые образцы характеризовались пороговым значением ΔE в районе 2 единиц, т.е. были визуально различимы сразу после приготовления.

Для описания различий в значениях аспектов цветов, результаты измерений были представлены в виде проекции на первые 2 главные компоненты (рис. 4).

Компоненты (Dim1, Dim2) описывают 92,81% всей вариации между образцами. Первая компонента преимущественно коррелирует со значением аспекта светлоты (L*), а вторая - с цветом сравниваемых образцов в диапазоне от синего к желтому (b*) (рис. 4А). Как видно из графика (рис. 4Б), образцы до и после нагрева имели существенные отличия в показателе светлоты. После нагрева для всех образцов была характерна общая тенденция к потемнению. Нагрев контрольного образца фикоцианина без белков характеризовался, кроме потемнения, существенным изменением окраски в области желто-синего спектра в сторону увеличения синего цвета (Δb* = -1,80±0,01), что может быть обусловлено изменением в структуре его хромофорных групп. Наименьшее и статистически значимое изменение цвета (тест Манна-Уитни: U=16, p=0,029) в диапазоне от синего к желтому отмечено для образца фикоцианина с концентратом белков молочной сыворотки (Δb* = 0,53±0,06), что в дополнение к полученным нами результатам термодинамических исследований подтверждает бо́льшую стабильность данного сочетания в условиях проведения эксперимента.

Таким образом, методами колориметрии и ДСК выявлены термозащитные эффекты белков яйца и молока в отношении фикоцианина. Поскольку на текущий период не существует эталонных значений таких эффектов и методических рекомендаций по оценке протективного действия белков относительно фикоцианинов, в связи с чем сравнить полученные данные с общепринятыми не представляется возможным, то научная новизна и практическая ценность работы заключается в получении информации о различной степени термозащитных эффектов белков молока и яйца по отношению к фикоцианинам.

Заключение

Проведенные исследования показали, что повышения термической стабильности фикоцианина возможно достичь при его сочетании с концентратом белков молочной сыворотки. Наблюдаемый протективный эффект сывороточных белков значительно превосходил защитное действие казеината натрия и овальбумина. Изучение окраски растворов фикоцианина при нагреве подтвердило меньшее изменение цвета образцов в диапазоне от синего к желтому в присутствии концентрата сывороточных белков. В целом полученные результаты указывают на более высокую стабильность хромофорных групп фикоцианина в модуле из сывороточных белков. Полученные данные можно использовать в перспективе для разработки новых форм функциональных пищевых ингредиентов, содержащих фикоцианин.

References

1. Popova A.Yu., Totolyan A.A. Methodology for assessing population immunity to the SARS-CoV-2 virus during the COVID-19 pandemic. Infektsia i immunitet [Infection and Immunity]. 2021; 11 (4): 609–16. DOI: https://doi.org/10.15789/2220- 7619-MFA-1770 (in Russian)

2. Kulichenko A.N., Maletskaya O.V., Sarkisyan N.S., Volynkina A.S. COVID-19 as a zoonotic infection. Infektsia i immunitet [Infection and Immunity]. 2021; 11 (4): 617–23. DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-CAA-1621 (in Russian)

3. Pagels F., Guedes A.C., Amaro H.M., Kijjoa A., Vasconcelos V. Phycobiliproteins from cyanobacteria: chemistry and biotechnological applications. Biotechnol Adv. 2019; 37 (3): 422–43. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2019.02.010

4. Arashiro L.T., Ferrer I., Pániker C.C., Gómez-Pinchetti J.L., Rousseau D.P., Van Hulle S.W.H., et al. Natural pigments and biogas recovery from microalgae grown in wastewater. ACS Sustainable Chem Eng. 2020; 8 (29): 10 691−701. DOI: https://doi.org/10.1021/acssuschemeng.0c01106

5. Pentón-Rol G., Marín-Prida J., McCarty M.F. C-phycocyanin-derived phycocyanobilin as a potential nutraceutical approach for major neurodegenerative disorders and COVID-19-induced damage to the nervous system. Curr Neuropharmacol. 2021; 19 (12): 2250–75. DOI: https://doi.org/10.2174/1570159X19666210408123807

6. Hudz N.I., Turkina V.A., Filipska A.M., Kuzminov O.B., Kоrytniuk R.S., Lubenets V.I., et al. Protein С-phycocyanin, structure, physicochemical and biological properties, methods of extraction. Biopolymers Cell. 2021; 37 (6): 407–18. DOI: https://doi.org/10.7124/bc.000A66

7. Evaluation of certain food additives: eighty-sixth report of the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives. Geneva: World Health Organization and Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2019 (WHO technical report series; No. 1014). Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO. URL: https://iris.who.int/handle/10665/279832 ISBN: 9789241210232.

8. Biryulina N.A., Zorin S.N., Nikityuk D.B., Mazo V.K. Modified method for obtaining phycocyanine concentrate of Arthrospira platensis biomass. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2023; 92 (5): 110–6. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2023-92-5-110-116 (in Russian)

9. deWit J.N., Klarenbeek G. Effects of various heat treatments on structure and solubility of whey proteins. J Dairy Sci. 1984; 67 (11): 2701–10. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(84)81628-8

10. Liu L., Dai X., Kang H., Xu Y., Hao W. Structural and functional properties of hydrolyzed/glycosylated ovalbumin under spray drying and microwave freeze drying. Food Sci Hum Wellness. 2020; 9 (1): 80–7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fshw.2020.01.003

11. Zhang B., Yao Y., Lu Y., Xu Y., Li W., Yan W. Sodium caseinate and OSA‐modified starch as carriers for the encapsulation of lutein using spray drying to improve its water solubility and stability. Int J Food Sci Technol. 2022; 57 (10): 6409–21. DOI: https://doi.org/10.1111/ijfs.15949

12. Mishra S.K., Shrivastav A., Mishra S. Effect of preservatives for food grade C-PC from Spirulina platensis. Process Biochem. 2008; 43 (4): 339–45. DOI: https://doi.org/10.1016/j.procbio.2007.12.012

13. Swaisgood H.E. Chemistry of the caseins. In: P.F. Fox, P.L.H. McSweeney (eds). Advanced Dairy Chemistry. 1. Proteins. 3rd ed. Part A. New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers, 2003: 1346 p.

14. Xia X., Tobin J.T., Fenelon M.A., Mcsweeney P.L.H., Sheehan J.J. Production, composition and preservation of micellar casein concentrate and its application in cheesemaking: a review. Int J Dairy Technol. 2022; 75 (1): 46–58. DOI: https://doi.org/10.1111/1471-0307.12829

15. Hammam A.R.A., Martínez-Monteagudo S.I., Metzger L.E. Progress in micellar casein concentrate: production and applications. Compr Rev Food Sci Food Saf. 2021; 20 (5): 4426–49. DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12795

16. Zhang S., Zhang Z., Dadmohammadi Y., Li Y., Jaiswal A., Abbaspourrad A. Whey protein improves the stability of C-phycocyanin in acidified conditions during light storage. Food Chem. 2021; 344: 128642. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.128642

17. Mokrzycki W.S., Tatol M. Colour difference ∆E – a survey. Mach Graph Vis. 2011; 20 (4): 383–411.

All articles in our journal are distributed under the CC BY-NC-ND 4.0 (Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International)

© GEOTAR-Media Publishing Group. The use of textual and illustrative content from this publication for the training of any artificial intelligence systems - including machine learning models and neural networks - is strictly prohibited without the prior written consent of the copyright holder.

SCImago Journal & Country Rank
Scopus CiteScore
CHIEF EDITOR
CHIEF EDITOR
Viktor A. Tutelyan
Full Member of the Russian Academy of Sciences, Doctor of Medical Sciences, Professor, Scientific Director of the Federal Research Centre of Nutrition, Biotechnology and Food Safety (Moscow, Russia)

Journals of «GEOTAR-Media»