Specialized fat-and-oil emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity

• Anton V. Tabakaev
• Oksana V. Tabakaeva

Abstract

The development of specialized fat-and-oil emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity is an important task of health concern in the Russian Federation.

The aim of the study was to develop specialized fat-and-oil emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity, the distinctive features of which are the presence of functional ingredients and bioactive compounds that meet modern safety requirements, have a hypolipidemic effect and influence on body weight.

Material and methods. As a source of fucoxanthin, an oil extract from the thallom (stratum) of the annual Undaria pinnatifida brown algae was used, obtained by re-extraction with soy oil for 8 hours from a glycerin extract (extractant – 60% glycerin solution, the duration of the process – 8 h). The determination of organoleptic parameters was carried out at a temperature of 20 °C 12 h after manufacture using standard methods. Organoleptic parameters were determined in the following sequence: consistency, appearance, color, smell, taste. Physical and chemical characteristics (mass content of fat, moisture, egg products in terms of dry yolk, acidity in terms of acetic acid, emulsion stability), acid and peroxide values were studied by standard methods. Fatty acid analysis of lipids was performed by gas-liquid chromatography. The fucoxanthin content was determined by spectrophotometric method.

Results. The presented formulations of lipid compositions as the fat base of specialized oil-fat emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity included Schizochytrium sp. microalgae oil in a mass fraction of 3–6% as a source of ω-3 polyunsaturated fatty acids (PUFAs) (eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids). An oil extract of U. pinnatifida brown algae in a mass fraction of 48–54% was used as a source of fucoxanthin. The total content of PUFA was significantly high – at least 73%, ω-6 PUFA prevailed (48.0–49.1%). However, the high content of ω-3 PUFA (at least 25%) should be also noted. The ratio of ω-3 to ω-6 PUFA was 1:1.72–1:1.90, which is atypical for individual vegetable oils traditionally used as the fat phase in fat-and-oil emulsion systems. The fucoxanthin content in the presented lipid compositions was 6.4–7.2 mg/100 ml. Edible fat-and-oil emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity (mayonnaise and mayonnaise sauces) with a given ratio of ω-3:ω-6 PUFA containing eicosopentaenoic and docosahexaenoic acids, as well as fucoxanthin, have been obtained. The extract of U. pinnatifida brown algae, containing fucoxanthin, significantly slowed down the processes of lipid oxidation and hydrolysis, as evidenced by changes in the peroxide and acid values of fat isolated from specialized fat-and-oil emulsion systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity.

Conclusion. Specialized fat-and-oil emulsion food systems for the prevention of hyperlipidemia and obesity (mayonnaise and mayonnaise sauces with different oil phase content), containing fucoxanthin, having an optimized fatty acid composition, a given ratio of ω-3:ω-6 PUFA, high content of essential PUFA (eicosopentaenoic and docosohexaenoic acids) are safe food products with traditional organoleptic characteristics and specified physical and chemical parameters.

Keywords:fucoxanthin; eicosopentaenoic acid; docosahexaenoic acid; fat-and-oil emulsion product; hyperlipidemia; obesity

References

1. Kuipers R.S., de Graaf D.J., Luxwolda M.F., Muskiet M.H., Dijck-Brouwer D.A., Muskiet F.A. Saturated fat, carbohydrates and cardiovascular disease. Neth J Med. 2011; 69 (9): 372–8. PMID: 21978979.

2. Kim S.M., Jung Y.H., Kwon O., Cha K.H., Um B.H. A potential commercial source of fucoxanthin extracted from the microalga Phaeodactylum tricornutum. Appl Biochem Biotechnol. 2012; 166: 1843–55. DOI: https://doi.org/10.1007/s12010-012-9602-2

3. Maoka T. Carotenoids as natural functional pigments. J Nat Med. 2020; 74 (1): 1–16. DOI: https://doi.org/10.1007/s11418-019-01364-x

4. Grebnev D.Yu., Maklakova I.Yu., Titova D.I., Permyakov N.S. Geroprotective properties of fucoxanthin. Ural Medical Journal. 2022; 21 (5): 94–101. DOI: http://doi.org/10.52420/2071-5943-2022-21-5-94-101 (in Russian)

5. Ahmed S.A., Mendonca P., Elhag R., Soliman K.F.A. Anticancer effects of fucoxanthin through cell cycle arrest, apoptosis induction, angiogenesis inhibition, and autophagy modulation. Int J Mol Sci. 2022; 23: 16091. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms232416091

6. Lopes F.G., Oliveira K.A., Lopes R.G., Poluceno G.G., Simioni C., Gabriel D.S.P., et al. Anti-cancer effects of fucoxanthin on human glioblastoma cell line. Anticancer Res. 2020; 40 (12): 6799–815. DOI: https://doi.org/10.21873/anticanres.14703

7. Méresse S., Fodil M., Fleury F., Chénais B. Fucoxanthin, a marine-derived carotenoid from brown seaweeds and microalgae: A promising bioactive compound for cancer therapy. Int J Mol Sci. 2020; 21 (3): 9273. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21239273

8. Jang H., Choi J., Park J.-K., Won G., Seol J.-W. Fucoxanthin exerts anti-tumor activity on canine mammary tumor cells via tumor cell apoptosis induction and angiogenesis inhibition. Animals. 2021; 11: 1512. DOI: https://doi.org/10.3390/ani11061512

9. Ahmed S.A., Mendonca P., Messeha S.S., Soliman K.F.A. Anticancer effects of fucoxanthin through cell cycle arrest, apoptosis induction, and angiogenesis inhibition in triple-negative breast cancer cells. Molecules. 2023; 28: 6536. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules2818653610

10. Liu M., Li W., Chen Y., Wan X., Wang J. Fucoxanthin: A promising compound for human inflammation-related diseases. Life Sci. 2020; 255: 117850. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lfs.2020.117850

11. Oliyaei N., Moosavi-Nasab M., Tamaddon A.M., Tanideh N. Antidiabetic effect of fucoxanthin extracted from sargassumangustifolium on streptozotocin-nicotinamide-induced type 2 diabetic mice. Food Sci Nutr. 2021; 9: 3521–9. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.2301

12. Qiu S., Shen Y., Wu Z., Zhang X., Ge S. Effects of algae subtype and extraction condition on extracted fucoxanthin antioxidant property: A 20-year meta-analysis. Algal Research. 2021; 53: 102161. DOI: https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.102161

13. Bae M., Kim M.-B., Park Y.-K., Lee J.-Y. Health benefits of fucoxanthin in the prevention of chronic diseases. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology of Lipids. 2020; 1865 (11): 158618. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2020.158618

14. Miyashita K., Beppu F., Hosokawa M., Liu X., Wang S. Nutraceutical characteristics of the brown seaweed carotenoid fucoxanthin. Arch Biochem Biophys. 2020; 686: 108364. DOI: https://doi.org/10.1016/j.abb.2020.108364

15. Mohibbullah M., Haque M.N., Sohag A.A.M., Hossain M.T., Zahan M.S., Uddin M.J., et al. A systematic review on marine algae-derived fucoxanthin: An update of pharmacological insights. Marine Drugs. 2022; 20 (5): 279. DOI: https://doi.org/10.3390/md20050279

16. Hu X., Li Y., Li C., Fu Y., Cai F., Chen Q., Li D. Combination of fucoxanthin and conjugated linoleic acid attenuates body weight gain and improves lipid metabolism in high-fat diet-induced obese rats. Arch. Biochem Biophys. 2012; 519: 59–65. DOI: https://doi.org/10.1016/j.abb.2012.01.011

17. Tong L. Acetyl-coenzyme A carboxylase: Crucial metabolic enzyme and attractive target for drug discovery. Cell. Mol. Life Sci. 2005; 62: 1784–803. DOI: https://doi.org/10.1007/s00018-005-5121-4

18. Beppu F., Hosokawa M., Niwano Y., Miyashita K. Effects of dietary fucoxanthin on cholesterol metabolism in diabetic/obese KK-A(y) mice. Lipids Health Dis. 2012; 11: 112. DOI: https://doi.org/10.1186/1476-511X-11-112

19. Dandona P., Aljada A., Chaudhuri A., Mohanty P., Garg R. Metabolic syndrome: A comprehensive perspective based on interactions between obesity, diabetes, and inflammation. Circulation. 2005; 111: 1448–54. DOI: https://doi.org/10.1161/01.CIR.0000158483.13093.9D

20. Karkhaneh Y., Hashtroudi S., Mashinchian M., Ghassempour A.R. Seasonal variation of fucoxanthin content in four species of brown seaweeds from Qeshm Island, Persian Gulf and evaluation of their antibacterial and antioxidant activities. Iranian Journal of Fisheries Sciences. 2020; 19 (5): 2394–409. DOI: https://doi.org/10.22092/ijfs.2020.122396

21. Zarekarizi A., Hoffmann L., Burritt D. Approaches for the sustainable production of fucoxanthin, a xanthophyll with potential health benefits. J Appl Phycol. 2019; 31: 281–99. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-018-1558-3

22. Sato A., Kawano H., Notsu T., Ohta M., Nakakuki M., Mizuguchi K., et al. Antiobesity effect of eicosapentaenoic acid in high-fath/high-sucrose diet–induced obesity. Diabetes. 2010; 59 (10): 2495–504. DOI: https://doi.org/10.2337/db09-1554

23. Pahlavani M., Ramalingam L., Miller E.K., Davis H., Scoggin S., Moustaid-Moussa N. Discordant dose-dependent metabolic effects of eicosapentanoic acid in diet-induced obese mice Nutrients. 2020; 12 (5): 1342. DOI: https://doi.org/10.3390/nu12051342

24. Albracht-Schulte K., Gonzalez S., Jackson A., Wilson S., Ramalingam L., Kalupahana N.S., Moustaid-Moussa N. Eicosapentaenoic acid improves hepatic metabolism and reduces inflammation independent of obesity in high-fat-fed mice and in hepG2 cells. Nutrients. 2019; 11 (3): 599. DOI: https://doi.org/10.3390/nu11030599

25. Wei W., Hu M., Huang J., Yu S., Li X., Li Y., Mao L. Anti-obesity effects of DHA and EPA in high fat-induced insulin resistant mice. Food Funct. 2021; 12 (4): 1614–25. DOI: https://doi.org/10.1039/d0fo02448a

26. Zhuang P., Lu Y., Shou Q., Mao L., He L., Wang J., et al. Differential anti-adipogenic effects of eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids in obesity. Mol Nutr Food Res. 2019; 63 (14): 1801135. DOI: https://doi.org/10.1002/mnfr.201801135

27. Zhang H.-J., Gao X., Guo X.-F., Li K-L., Li S., Sinclair A.J., Li D. Effects of dietary eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid supplementation on metabolic syndrome: A systematic review and meta-analysis of data from 33 randomized controlled trials. Clin Nutr. 2021; 40 (7): 4538–50. DOI: https://doi.org/10.1016/j.clnu.2021.05.025

28. Tabakaev A.V., Tabakaeva O.V., Prihod’ko Yu.V. The study of consumer interest in specialized food systems for the prevention of an alimentary-dependent socially significant disease – obesity. Tekhnologiya i tovarovedenie innovatsionnykh pishchevykh produktov [Technology and Commodity Science of Innovative Food Products]. 2023; (1): 94–101. DOI: https://doi.org/10.33979/2219-8466-2023-78-6-94-101 (in Russian)

29. Sukhoveeva M.V., Podkorytova A.V. Commercial algae and grasses of the seas of the Far East: biology, distribution, reserves, processing technology Vladivostok: TINRO Center; 2006: 243 р. ISBN 5-89131-055-4 (in Russian)

30. Nechaev A.P. Mayonnaise. St Petersburg: GIORD; 2000: 80 p. ISBN 5-901065-17-4. (in Russian)

31. Tabakaev A.V., Tabakaeva O.V., Prihod’ko Yu.V. Method for obtaining xanthophylls from Undaria pinnatifida Patent for invention 2789359 C1, 02.02.2023. Application No. 2022106456 dated 03/14/2022. (in Russian)

32. Tabakaev A.V., Tabakaeva O.V. Comparative characteristics of carotenoid profiles and antiradical properties of extracts of brown kelp from the Sea of Japan. Chem Nat Compd. 2022; 58 (2): 352–4. DOI: https://doi.org/10.1007/s10600-022-03678-x

33. Narayani S., Saravanan S., Bharathiraja S., Mahendran S. Extraction, partially purifica­tion and study on antioxidant property of fucoxanthin from Sargassum cinereum. J Agardh Pharm Res. 2016; 8 (3): 610–6. DOI: https://doi.org/10.17844/jphpi.v20i2.18105

34. Novak I.S. Quantitative analysis by gas chromatography. Moscow: Mir; 1978: 180 p. (in Russian)

35. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts. J Chromatogr. 1978; 151: 384–90.

36. Sizova N.V., Pikuleva I.V., Chikunova T.M. Fatty acid composition of Camelina sativa (L.) Crantz oil and selection of optimal antioxidant. Khimija Rastitel’nogo Syr’ja [Chemistry of Plant Raw Material]. 2003; 2: 27–31. (in Russian)

37. Abidov M., Ramazanov Z., Seifulla R., Grachev S. The effects of Xanthigen in the weight management of obese premenopausal women with non-alcoholic fatty liver disease and normal liver fat. Diabetes Obes Metab. 2010; 12: 72–81. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1463-1326.2009.01132.x

38. Din N.A.S., Mohd Alayudin ‘A.S., Sofian-Seng N-S., Rahman H.A., Mohd Razali N.S., Lim S.J., et al. Brown algae as functional food source of Fucoxanthin: A review. Foods. 2022; 11 (5): 2235. DOI: https://doi.org/10.3390/foods11152235

Жирнокислотный состав разработанных специализированных масложировых эмульсионных систем для профилактики гиперлипидемии и ожирения характеризуется высоким содержанием ПНЖК, в том числе и высоконепредельных ЭПК и ДГК, которые являются соединениями, легко подвергающимися окислению. Ксантофиллы бурых водорослей, в первую очередь фукоксантин, являются эффективными антиоксидантами [38]. Данное свойство фукоксантина исследовано на процессах окисления жировой фазы разработанных специализированных масложировых эмульсионных систем. На рис. 1 представлена динамика окисления липидов, выделенных из разработанных пищевых систем, которые хранили в закрытых емкостях без доступа света и кислорода при температуре 4-5 °С.

Данные рис. 1 демонстрируют, что экстракт бурой водоросли U. pinnatifida, содержащий фукоксантин и другие ксантофиллы, существенно замедляет процессы окисления липидов, о чем свидетельствуют изменения перекисного числа жира, выделенного из специализированных масложировых эмульсионных пищевых систем для профилактики гиперлипидемии и ожирения. Скорость накопления первичных продуктов окисления - перекисей и гидроперекисей - в липидах разработанных специализированных пищевых систем существенно ниже, чем в контрольном образце, не содержащем дополнительных антиоксидантов. Перекисное число липидов, выделенных из контрольного образца, достигало предельного нормативного значения 10 ммоль О₂/кг после 4 мес хранения, а липидов, выделенных из разработанных пищевых систем, - после 6-7 мес хранения.

Кислотное число, косвенно характеризующее глубину гидролиза липидов, также является важным показателем качества. Динамика гидролиза липидов жира, выделенного из специализированных масложировых эмульсионных пищевых систем для профилактики гиперлипидемии и ожирения, представлена на рис. 2.

Присутствие в рецептуре специализированных масложировых эмульсионных пищевых систем для профилактики гиперлипидемии и ожирения масляного экстракта фукоксантина из бурой водоросли U. pinnatifida в качестве антиоксиданта оказывает влияние на скорость гидролиза триглицеридов жировой фазы, что доказывает динамика изменения кислотного числа опытных и контрольного образцов. Гидролитические процессы окисления триглицеридов в разработанных пищевых системах протекают существенно медленнее. Для контрольного образца верхний предел кислотного числа достигается в течение 4 мес, для опытных образцов - в течение 6 мес.

Полученные уравнения регрессии, описывающие изменения перекисного и кислотного чисел специализированных масложировых эмульсионных пищевых систем для профилактики гиперлипидемии и ожирения от времени хранения, представлены в табл. 8.

Коэффициент аппроксимации, характеризующий полученные уравнения, позволяет утверждать их адекватность и возможность использования для описания процесса, так как составляет не менее 0,9883.

С целью подтверждения сохранения метаболически активных веществ (ЭПК и ДГК и фукоксантина) в специализированных масложировых эмульсионных пищевых системах для профилактики гиперлипидемии и ожирения определено их содержание после 6 мес хранения в описанных выше условиях (табл. 9).

Согласно представленным в табл. 9 данным, хотя при хранении снижается содержание фукоксантина (на 10,0-19,4%), оно остается достаточно высоким. Также наблюдается уменьшение уровня эссенциальных ПНЖК: ЭПК на 11,8-15,0% и ДГК на 7,6-15,7%. В контрольном образце снижение содержания ЭПК составило 25,0%, ДГК - 41,9%, что существенно выше, чем в модельных системах с фукоксантином.

Оценка соответствия специализированной пищевой продукции осуществляется в форме государственной регистрации в соответствии с порядком, установленным техническим регламентом Таможенного союза 021/2011 "О безопасности пищевой продукции". При государственной регистрации продукции диетического лечебного и диетического профилактического питания предоставляется документ(ы), подтверждающий(е) заявленные лечебные и (или) профилактические свойства. С учетом этого запланированы дальнейшие доклинические исследования по оценке эффективности масложировых эмульсионных пищевых систем, подтверждающие их профилактический эффект в отношении гиперлипидемии и ожирения.

Заключение

Согласно полученным результатам специализированные масложировые эмульсионные пищевые системы для профилактики гиперлипидемии и ожирения (майонезы и соусы майонезные с различным содержанием жировой фазы), включающие уникальный ксантофилл морского происхождения - фукоксантин, имеющие оптимизированный жирнокислотный состав, заданное соотношение ЖК семейств ω-6/ω-3, высокое содержание полиненасыщенных эссенциальных ЖК (ЭПК и ДГК), являются безопасными пищевыми продуктами с традиционными органолептическими характеристиками и заданными физико-химическими показателями. Введение масляного экстракта из бурой водоросли U. pinnatifida, содержащего фукоксантин в качестве компонента липидной композиции, используемой в качестве жировой фазы, существенно снижает скорости гидролиза и окисления липидов по сравнению с контролем, что увеличивает срок хранения с 3 до 6 мес.

Литература

1. Kuipers R.S., de Graaf D.J., Luxwolda M.F., Muskiet M.H., Dijck-Brouwer D.A., Muskiet F.A. Saturated fat, carbohydrates and cardiovascular disease // Neth. J. Med. 2011. Vol. 69, N 9. Р. 372-378.

2. Kim S.M., Jung Y.H., Kwon O., Cha K.H., Um B.H. A potential commercial source of fucoxanthin extracted from the microalga Phaeodactylum tricornutum // Appl. Biochem. Biotechnol. 2012. Vol. 166. Р. 1843-1855. DOI: https://doi.org/10.1007/s12010-012-9602-2

3. Maoka T. Carotenoids as natural functional pigments // J. Nat. Med. 2020. Vol. 74, N 1. Р. 1-16. DOI: https://doi.org/10.1007/s11418-019-01364-x

4. Гребнев Д.Ю., Маклакова И.Ю., Титова Д.И., Пермяков Н.С. Геропротекторные свойства фукоксантина // Уральский медицинский журнал. 2022. Т. 21. № 5. С. 94-101. DOI: http://doi.org/10.52420/2071-5943-2022-21-5-94-101

5. Ahmed S.A., Mendonca P., Elhag R., Soliman K.F.A. Anticancer effects of fucoxanthin through cell cycle arrest, apoptosis induction, angiogenesis inhibition, and autophagy modulation // Int. J. Mol. Sci. 2022. Vol. 23. Article ID 16091. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms232416091

6. Lopes F.G., Oliveira K.A., Lopes R.G., Poluceno G.G., Simioni C., Gabriel D.S.P. et al. Anti-cancer effects of fucoxanthin on human glioblastoma cell line // Anticancer Res. 2020. Vol. 40, N 12. Р. 6799-6815. DOI: https://doi.org/10.21873/anticanres.14703

7. Méresse S., Fodil M., Fleury F., Chénais B. Fucoxanthin, a marine-derived carotenoid from brown seaweeds and microalgae: A promising bioactive compound for cancer therapy // Int. J. Mol. Sci. 2020. Vol. 21, N 23. Р. 9273. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21239273

8. Jang H., Choi J., Park J.-K., Won G., Seol J.-W. Fucoxanthin exerts anti-tumor activity on canine mammary tumor cells via tumor cell apoptosis induction and angiogenesis inhibition // Animals. 2021. Vol. 11. Article ID 1512. DOI: https://doi.org/10.3390/ani11061512

9. Ahmed S.A., Mendonca P., Messeha S.S., Soliman K.F.A. Anticancer effects of fucoxanthin through cell cycle arrest, apoptosis Induction, and angiogenesis inhibition in triple-negative breast cancer cells // Molecules. 2023. Vol. 28. Article ID 6536. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules2818653610

10. Liu M., Li W., Chen Y., Wan X., Wang J. Fucoxanthin: A promising compound for human inflammation-related diseases // Life Sci. 2020. Vol. 255. Article ID 117850. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lfs.2020.117850

11. Oliyaei N., Moosavi-Nasab M., Tamaddon A.M., Tanideh N. Antidiabetic effect of fucoxanthin extracted from sargassumangustifolium on streptozotocin-nicotinamide-induced type 2 diabetic mice // Food Sci. Nutr. 2021. Vol. 9. Р. 3521-3529. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.2301

12. Qiu S., Shen Y., Wu Z., Zhang X., Ge S. Effects of algae subtype and extraction condition on extracted fucoxanthin antioxidant property: A 20-year meta-analysis // Algal Research. 2021. Vol. 53. Article ID 102161. DOI: https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.102161

13. Bae M., Kim M.-B., Park Y.-K., Lee J.-Y. Health benefits of fucoxanthin in the prevention of chronic diseases // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology of Lipids. 2020. Vol. 1865, N 11. Article ID 158618. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2020.158618

14. Miyashita K., Beppu F., Hosokawa M., Liu X., Wang S. Nutraceutical characteristics of the brown seaweed carotenoid fucoxanthin // Arch. Biochem. Biophys. 2020. Vol. 686. Article ID 108364. DOI: https://doi.org/10.1016/j.abb.2020.108364

15. Mohibbullah M., Haque M.N., Sohag A.A.M., Hossain M.T., Zahan M.S., Uddin M.J. et al. A systematic review on marine algae-derived fucoxanthin: An update of pharmacological insights // Marine Drugs. 2022. Vol. 20, N 5. Article ID 279. DOI: https://doi.org/10.3390/md20050279

16. Hu X., Li Y., Li C., Fu Y., Cai F., Chen Q., Li D. Combination of fucoxanthin and conjugated linoleic acid attenuates body weight gain and improves lipid metabolism in high-fat diet-induced obese rats // Arch. Biochem. Biophys. 2012. Vol. 519. Р. 59-65. DOI: https://doi.org/10.1016/j.abb.2012.01.011

17. Tong L. Acetyl-coenzyme A carboxylase: Crucial metabolic enzyme and attractive target for drug discovery // Cell. Mol. Life Sci. 2005. Vol. 62. Р. 1784-1803. DOI: https://doi.org/10.1007/s00018-005-5121-4

18. Beppu F., Hosokawa M., Niwano Y., Miyashita K. Effects of dietary fucoxanthin on cholesterol metabolism in diabetic/obese KK-A(y) mice // Lipids Health Dis. 2012. Vol. 11. Article ID 112. DOI: https://doi.org/10.1186/1476-511X-11-112

19. Dandona P., Aljada A., Chaudhuri A., Mohanty P., Garg R. Metabolic syndrome: A comprehensive perspective based on interactions between obesity, diabetes, and inflammation // Circulation. 2005. Vol. 111. Р. 1448-1454. DOI: https://doi.org/10.1161/01.CIR.0000158483.13093.9D

20. Karkhaneh Y., Hashtroudi S., Mashinchian M., Ghassempour A.R. Seasonal variation of fucoxanthin content in four species of brown seaweeds from Qeshm Island, Persian Gulf and evaluation of their antibacterial and antioxidant activities // Iranian Journal of Fisheries Sciences. 2020. Vol. 19, N 5. Р. 2394-2409. DOI: https://doi.org/10.22092/ijfs.2020.122396

21. Zarekarizi A., Hoffmann L., Burritt D. Approaches for the sustainable production of fucoxanthin, a xanthophyll with potential health benefits // J. Appl. Phycol. 2019. Vol. 31. Р. 281-299. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-018-1558-3

22. Sato A., Kawano H., Notsu T., Ohta M., Nakakuki M. et al. Antiobesity effect of eicosapentaenoic acid in high-fath/high-sucrose diet-induced obesity // Diabetes. 2010. Vol. 59, N 10. Р. 2495-2504. DOI: https://doi.org/10.2337/db09-1554

23. Pahlavani M., Ramalingam L., Miller E.K., Davis H., Scoggin S., Moustaid-Moussa N. Discordant dose-dependent metabolic effects of eicosapentanoic acid in diet-induced obese mice // Nutrients. 2020. Vol. 12, N 5. Р. 1342. DOI: https://doi.org/10.3390/nu12051342

24. Albracht-Schulte K., Gonzalez S., Jackson A., Wilson S., Ramalingam L., Kalupahana N.S., Moustaid-Moussa N. Eicosapentaenoic acid improves hepatic metabolism and reduces inflammation independent of obesity in high-fat-fed mice and in hepG2 cells // Nutrients. 2019. Vol. 11, N 3. Article ID 599. DOI: https://doi.org/10.3390/nu11030599

25. Wei W., Hu M., Huang J., Yu S., Li X., Li Y., Mao L. Anti-obesity effects of DHA and EPA in high fat-induced insulin resistant mice // Food Funct. 2021. Vol. 12, N 4. Р. 1614-1625. DOI: https://doi.org/10.1039/d0fo02448a

26. Zhuang P., Lu Y.,Shou Q., Mao L., He L., Wang J. et al. Differential anti-adipogenic effects of eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids in obesity // Mol. Nutr. Food Res. 2019. Vol. 63, N 14. Article ID 1801135. DOI: https://doi.org/10.1002/mnfr.201801135

27. Zhang H.-J., Gao X., Guo X-F., Li K-L., Li S., Sinclair A.J., Li D. Effects of dietary eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid supplementation on metabolic syndrome: A systematic review and meta-analysis of data from 33 randomized controlled trials // Clin. Nutr. 2021. Vol. 40, N 7. P. 4538-4550. DOI: https://doi.org/10.1016/j.clnu.2021.05.025

28. Табакаев А.В., Табакаева О.В., Приходько Ю.В. Изучение потребительского интереса к специализированным пищевым системам для профилактики алиментарно-зависимого социально значимого заболевания - ожирения // Технология и товароведение инновационных пищевых продуктов. 2023. № 1. С. 94-101. DOI: https://doi.org/10.33979/2219-8466-2023-78-6-94-101

29. Суховеева М.В., Подкорытова А.В. Промысловые водоросли и травы морей Дальнего Востока: биология, распространение, запасы, технология переработки. Владивосток : ТИНРО-центр, 2006. 243 с. ISBN 5-89131-055-4

30. Нечаев А.П. Майонезы. Санкт-Петербург : ГИОРД, 2000. 80 с. ISBN 5-901065-17-4.

31. Табакаев А.В., Табакаева О.В., Приходько Ю.В. Способ получения ксантофиллов из Undaria pinnatifida : Патент на изобретение 2789359 C1, 02.02.2023. Заявка № 2022106456 от 14.03.2022.

32. Tabakaev A.V., Tabakaeva O.V. Comparative characteristics of carotenoid profiles and antiradical properties of extracts of brown kelp from the Sea of Japan // Chem. Nat. Compd. 2022. Vol. 58, N 2. Р. 352-354. DOI: https://doi.org/10.1007/s10600-022-03678-x

33. Narayani S., Saravanan S., Bharathiraja S., Mahendran S. Extraction, partially purification and study on antioxidant property of fucoxanthin from Sargassum cinereum // J. Agardh Pharm. Res. 2016. Vol. 8, N 3. Р. 610-616. DOI: https://doi.org/10.17844/jphpi.v20i2.18105

34. Новак И.С. Количественный анализ методом газовой хроматографии. Москва : Мир, 1978. 180 с.

35. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts // J. Chromatogr. 1978. Vol. 151. Р. 384-390. DOI: https://doi.org/10.1016/S0021-9673(00)88356-9

36. Сизова Н.В., Пикулева И.В., Чикунова Т.М. Жирнокислотный состав масла саmеlinа sativa (L.) Crantz и выбор оптимального антиоксиданта // Химия растительного сырья. 2003. № 2. С. 27-31.

37. Abidov M., Ramazanov Z., Seifulla R., Grachev S. The effects of Xanthigen in the weight management of obese premenopausal women with non-alcoholic fatty liver disease and normal liver fat // Diabetes Obes. Metab. 2010. Vol. 12. Р. 72-81. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1463-1326.2009.01132.x

38. Din N.A.S., Mohd Alayudin ‘A.S., Sofian-Seng N-S., Rahman H.A., Mohd Razali N.S., Lim S.J., et al. Brown algae as functional food source of fucoxanthin: A review // Foods. 2022. Vol. 11, N 15. Article ID 2235. DOI: https://doi.org/10.3390/foods11152235

All articles in our journal are distributed under the CC BY-NC-ND 4.0 (Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International)

© GEOTAR-Media Publishing Group. The use of textual and illustrative content from this publication for the training of any artificial intelligence systems - including machine learning models and neural networks - is strictly prohibited without the prior written consent of the copyright holder.